MDCK细胞的悬浮驯化及初步应用

目的：驯化MDCK细胞使之适应悬浮培养,以之作为生产流感病毒疫苗的介质,为以细胞代替鸡胚制备流感病毒疫苗提供保证。方法：通过直接法和间接法分别驯化MDCK细胞,放大培养能悬浮生长的MDCK细胞,并以之作为介质培养流感病毒。结果：获得了能悬浮培养的MDCK细胞,其在悬浮条件下生长良好;以之作为载体培养流感病毒,可获得较高产量的病毒。结论：建立了悬浮培养的MDCK细胞,以之作为载体培养流感病毒可获得较高病毒滴度,为细胞培养生产流感病毒疫苗奠定了基础。     

生产禽流感病毒的悬浮MDCK细胞稳定性的研究

旨为研究悬浮MDCK细胞在长期传代过程中细胞生长稳定性与病毒生产稳定性.以悬浮MDCK细胞为研究对象,通过对该细胞进行了长达200多天的传代培养,考察了传代过程中各代次细胞的生长情况以及对H9N2禽流感病毒的生产能力差异;探究了不同培养基稀释比例和MOI等工艺参数条件对长期传代的悬浮MDCK细胞生产H9N2禽流感病毒过...     

MDCK单克隆细胞库的建立及检定

目的:建立甲型H1N1流感病毒疫苗株高适应MDCK单克隆细胞库,用于培养生产流感病毒疫苗,为细胞代替鸡胚制备流感病毒疫苗提供保证。方法:用有限稀释法将MDCK细胞进行单克隆化,通过血凝和TCID50筛选甲型H1N1流感病毒疫苗株的高适应性单克隆化细胞株,扩大培养建立细胞库并进行检定。结果:共制备了97株单克隆化MDCK细胞,筛选到甲型H1N1流感病毒疫苗株高适应性MDCK单克隆细胞株,扩大培养建立了细胞库,经检定符合《中华人民共和国药典.三部》(2010版)对细胞库的要求。结论:建立了甲型H1N1流感病毒疫苗株高适应性MDCK单克隆细胞库,为细胞培养生产流感病毒疫苗奠定了基础。     

悬浮MDCK-STAT1-KO工程细胞的流感病毒生产过程研究

目的：MDCK-STAT1-KO工程细胞已被证实可高效生产H1N1流感病毒,但受限于培养规模和血清依赖性等贴壁培养固有的性质,该细胞株难以应用到实际的疫苗生产中。单细胞悬浮培养易于放大,操作简便,备受疫苗生产青睐。但MDCK-STAT1-KO工程细胞在悬浮培养条件下的病毒生产情况及其病毒感染应激特征尚不清楚,限制了其进一步应用。方法：采用生产上的常规培养方式（传代培养和批式培养）和接毒条件[感染复数（MOI）=0.001],考察悬浮MDCK-STAT1-KO工程细胞（susMDCK-STAT1^-）的生长和病毒生产情况;改变关键接毒参数,考察MOI、营养条件和毒株类型对susMDCK-STAT1^-细胞产毒的影响。设置同步感染实验,考察该细胞在病毒感染后的细胞凋亡水平和细胞免疫应激水平。结果：susMDCK-STAT1^-细胞生产H1N1病毒的最大HA滴度和最大Svy分别为（12.40±0.11）log₂HAU/100μL和（15.86±1.34）×10～3 virions/cell,均为H1N1病毒生产较高水平,同时改变关键工艺参数均不会影响该细胞株高效生产流感病毒的特性。此外,susMDCK-STAT1^-细胞具有一定抗凋亡特性,以及其胞内全局性的低免疫防御水平,有利于病毒快速扩增。结论：susMDCK-STAT1^-细胞可高效生产流感病毒,同时其抗凋亡特性及胞内低免疫水平是该细胞株高效生产的关键因素。该细胞有望未来应用于流感病毒疫苗的实际生产中,提高流感病毒生产水平。     

贡蕉胚性细胞悬浮系的建立和植株再生

鲜食蕉品种的高度不育性和多倍性制约了用传统育种方法培育生产实践中所需的新品种 ,建立稳定的胚性细胞悬浮系是香蕉生物技术育种的前提。以目前国内尚未建立该体系的鲜食蕉品种贡蕉 (AA)未成熟雄花序的第 1～ 15位花梳为外植体 ,对胚性细胞悬浮系的建立和植株再生体系进行了优化。结果表明 ,5～ 6个月的培养后可获得分生小球体和浅黄色、松散易碎的胚性愈伤组织。 9μmol/L 2,4 D对外植体愈伤组织的诱导效果最好 ,诱导率为 40.96 % ,胚性愈伤组织诱导率可达7.45 % ,其中5.79%的胚性愈伤组织来源于第 6～12号位置的花梳。胚性愈伤组织悬浮培养后 ,通过 3个月的筛选和继代培养 ,可得到均质的胚性细胞悬浮系。该培养体系合适继代周期为 15d ,继代时合适的起始接种量为每 30mL培养基加 2mLPCVECS。培养 6个月的胚性细胞在体细胞胚诱导培养基中培养15d后可见到白色半透明体细胞胚的发生 ,体细胞胚诱导率为 2 80× 10³个 mLPCV。成熟体细胞胚的萌发率为 17 2 8% ,其中发育成正常的再生植株的百分率为 14 16 %。     

大麦胚性细胞悬浮系的建立及其生长特性

由春大麦品种“如车”种胚诱导的松脆型胚性愈伤组织经2个月的悬浮培养,成功建立分散性好、生长速度快的胚性细胞悬浮系。该系细胞直径为1-3mm,由富含淀粉粒的胚性薄壁细胞构成。经不同浓度2,4-D实验,发现2mg/L最适合该细胞系的生长。文中对成功建立大麦胚性细胞悬浮系的关键问题进行了讨论。     

稳定表达人Eps8基因的胶质瘤U251细胞系的建立

应用亚克隆方法构建pEGFP-C3／Eps8真核表达载体,经测序鉴定后,用脂质体进行胶质瘤U251细胞的转染,应用G418筛选出稳定表达pEGFP-C3／Eps8和pEGFP—C3的细胞系,最后通过Western blot和荧光定位证明印娼在U251细胞中过量表达。本实验成功建立了稳定转染Eps8的U251细胞系,为进一步研究Eps8基因在胶质瘤中的功能奠定了良好的实验基础。     

MDCK细胞和MDCK-G1细胞感染H1N1流感病毒后病毒滴度和细胞转录组表达差异分析

目的通过分析细胞表达基因及其相关信号通路的差异等信息,探索MDCK和MDCK-G1细胞株在接种H1N1流感病毒后出现病毒滴度和细胞生长趋势差异的内在生物学特性等原因。方法通过Illumina测序平台对2株细胞进行转录组测序(RNA sequencing, RNA-seq)和测序结果生物信息学分析后,选择了17个差异基因进行实时定量聚合酶链反应(quantitative real-time polymerase chain reaction, qRT-PCR)验证。结果 MDCK和MDCK-G1细胞差异基因(differentially expressed genes, DEGs)|log_2(FoldChange)|0和padj≤0.05总数为2 786个。相比于MDCK细胞,MDCK-G1细胞有967个基因的表达显著上升,1 819个基因的表达显著下降。差异基因通过基因本体(Gene Ontology, GO)数据库富集功能注释和京都基因和基因组数据库(Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes, KEGG)进行通路分析发现,2株细胞在免疫调控和细胞生长周期调控上均存在差异,qRT-PCR验证的17个基因中有16个基因的表达趋势与转录组测序结果一致。结论 2株细胞的转录谱存在显著差异。     

稳定表达鼠源PLEKHA1细胞系的建立及其对细胞迁移的影响

目的：构建稳定表达鼠源PLEKHA1的RAW264.7小鼠巨噬细胞系,探讨PLEKHA1过表达对巨噬细胞迁移的影响。方法：根据小鼠PLEKHA1基因序列设计引物,克隆其编码区序列,酶切后插入pCDH载体,在293FT细胞中进行病毒的包装,用获得的高滴度慢病毒感染RAW264.7细胞,建立能稳定高效表达PLEKHA1的RAW264.7细胞系;在此基础上,观察PLEKHA1对巨噬细胞迁移的影响。结果：经基因克隆、酶切、连接后,构建了鼠源PLEKHA1重组慢病毒表达载体,包装病毒感染RAW264.7细胞,经嘌呤霉素筛选后免疫印迹检测,RAW264.7细胞中PLEKHA1的蛋白表达提高近30倍;同时,发现PLEKHA1的过表达影响RAW264.7细胞的迁移。结论：构建了稳定表达小鼠PLEKHA1的RAW264.7细胞系,PLEKHA1过表达降低RAW264.7细胞的迁移能力。     

建立稳定表达人RANTES基因的夏枯草细胞克隆

为了在中药细胞中表达人源有用基因 ,以增强其特异药理活性 ,将克隆自人外周血淋巴细胞 (PBL)mRNA的RANTES基因经Ti质粒衍生的中间表达载体pROKII导入携带pAL44 0 4质粒的根癌农杆菌LBA44 0 4菌株中 ,并采用叶盘共培养法转化离体培养夏枯草细胞 ,经Southern杂交确认RANTES基因在转化细胞基因组中的整合 ,用RT -PCR扩增、Western印迹杂交和酶联免疫吸附测定 (ELISA)分析转化细胞中RANTES基因的表达 ,以PBL的过氧化物酶活性作为重组RANTES对细胞趋化性诱导的检测指标。结果表明 ,RANTES基因已在转基因夏枯草细胞中整合 ,并已形成稳定表达RANTES基因的细胞克隆 ,为进一步培育具有特异药理活性的转基因夏枯草植株打下了基础。     

草地早熟禾悬浮体系的建立及悬浮过程中细胞形态观察

对早熟禾(Mardona)成熟种子灭菌后,接种于MS2 BA0.1诱导培养基,26℃,全黑暗培养诱导胚性愈伤,挑选其中松散的颗粒状胚性愈伤悬浮于MS2 BA0.1液体培养基中,在90~110r/min,26℃黑暗培养下,悬浮培养2个月,建立悬浮体系。在悬浮培养过程中,对细胞形态进行显微观察,发现悬浮培养前期,细胞多为条状、棒状,且大小不一。培养20天后,悬浮培养物开始增殖,2个月后,悬浮体系建立,细胞大小均匀,颜色嫩白。     

细胞密度和营养供给对H1N1流感病毒产率的影响

探究细胞培养生产流感病毒过程中,高细胞密度引起低单位细胞病毒产率(Svy)的原因及找到解决方法。通过增加微载体浓度以及换液操作获得较高的细胞密度;考察了感染时细胞密度(CCI)和病毒感染用维持培养基对病毒产量和单位细胞病毒产率的影响。在12.6 g/L微载体培养过程中,通过换液操作,可获得高细胞密度,达到1.47×107 cells/m L。在CCI为1×107cells/m L条件时,选择合适的维持培养基,其Svy最高达到5.14×103 virions/cell,比同等条件下用DMEM维持培养基的Svy值提高了近一倍。高密度培养MDCK细胞生产流感病毒时,充分考虑不同阶段的培养条件和营养需求,可以提高细胞密度和单位细胞病毒产率,进而提高流感病毒的产量。该研究结果为工业化生产流感病毒疫苗提供了基础数据。     

建立金线莲原球茎悬浮体系生产次生代谢产物

研究植物激素浓度和培养周期对金线莲原球茎悬浮培养生长及其代谢产物积累的影响,以增加金线莲悬浮培养的生长量,提高次生代谢产物的生产。结果表明,MS培养基添加S-3307 1.0mg/L,6-BA0.5mg/L和3%的蔗糖适合总生物量的生长(214.45g/L,FW和18.23g/L DW)。而MS培养基添加S-3307 1.0mg/L,6-BA 3.0mg/L和5%的蔗糖,总黄酮,总酚和多糖的干重(5.43mg/g,2.87mg/g和243.23mg/g)达到最大化。研究原球茎悬浮培养过程,发现经过7个星期培养就能获得最大的生物质总量(225.98 g/L的FW和18.53 g/L的DW)、总黄酮干重(5.09mg/g)和总酚干重(2.04mg/g),而多糖生产达到其峰值(229.36mg/g干重)是在培养后5个星期。     

三分三悬浮培养细胞中苯丙氨酸、鸟氨酸和莨菪碱至东莨菪碱的生物转化

在三分三悬浮培养中分别补充前体苯丙氨酸、鸟氨酸和莨菪碱时,悬浮细胞的生长速率及东莨菪碱的转化率均以补充苯丙氨酸者为最高,分别比未加前体的对照增加50.2％和4.0％。 在上述处理培养两周后于培养液中分别加入70ppm的放线菌酮抑制蛋白质合成时,虽然细胞中东莨菪碱的转化按克干重计算均有明显增加,但是由于细胞生长受强烈抑制不利于东莨菪碱的总的转化,按每瓶总干重计算的转化率均比对照低。 在分别补充三种前体并培养两周后使营养缺乏时,细胞生长比对照稍有降低,但细胞中东莨菪碱的转化却显著增加。特别是补充莨菪碱并使营养缺乏时,大大利于莨菪碱转化为东莨菪碱,转化率高达27.4％。既降低了培养成本又提高了东莨菪碱产量,有利于未来的工业生产。     

Somatic embryogenesis and plant regeneration of litchi (Litchi chinensis Sonn.) from leaves of mature phase trees

Embryogenic cultures were induced from leaflets from new vegetative flushes of mature ‘Brewster’ litchi trees on B5 medium containing 400 mg l⁻¹ glutamine, 200 mg l⁻¹ casein hydrolysate, 30 g l⁻¹ sucrose, 4.52 μM 2,4-D, 9.30 μM kinetin and 3 g l⁻¹ gellan gum in darkness. Embryogenic cultures consisting of proembryonic cells and masses were maintained either on semi-solid MS medium supplemented with 4.52 μM 2,4-D and 0.91 μM zeatin or as embryogenic suspension cultures in liquid medium of the same composition. Maturation of somatic embryos occurred on semi-solid MS medium with 5–20% (v/v) filter-sterilized coconut water in darkness. Recovery of plants from somatic embryos was improved with 14.4 μM GA₃ on half-strength MS medium with 0.2 g l⁻¹ activated charcoal under a 16 h photoperiod provided by cool white fluorescent lights (60–80 μmol s⁻¹ m⁻²). Plants have been successfully acclimatized in the greenhouse.     

悬浮培养CHO 细胞生产重组人促红细胞生成素条件的优化*

目的:通过对贴壁培养CHO细胞筛选驯化,得到高表达的细胞后进行悬浮培养生产重组人促红细胞生成素(rHuEPO)。方法:利用96孔板和24孔板对CHO细胞进行筛选,得到高表达细胞株后进行驯化,使其适合悬浮培养,经过摇瓶扩增后接种到生物反应器中无血清培养,每天监测葡萄糖含量,测rHuEPO表达量。结果:悬浮培养CHO细胞生产rHuEPO,生产周期短,表达量比贴壁培养高出很多,操作方便,减少污染,易于放大,并建立了适合悬浮培养的CHO细胞株,为工业化悬浮培养CHO细胞生产rHuEPO提供了技术基础。结论:经过工艺优化后利用无血清悬浮培养生产促红细胞生成素平均表达量较贴壁培养高,生产周期短,有利于降低生产成本。     

Proliferative effects of apical, but not basal, matrix metalloproteinase-7 activity in polarized MDCK cells

Matrix metalloproteinase-7 (MMP-7) is primarily expressed in glandular epithelium. Therefore, its mechanism of action may be influenced by its regulated vectorial release to either the apical and/or basolateral compartments, where it would act on its various substrates. To gain a better understanding of where MMP-7 is released in polarized epithelium, we have analyzed its pattern of secretion in polarized MDCK cells expressing stably transfected human MMP-7 (MDCK-MMP-7), and HCA-7 and Caco2 human colon cancer cell lines. In all cell lines, latent MMP-7 was secreted to both cellular compartments, but was 1.5- to 3-fold more abundant in the basolateral compartment as compared to the apical. However, studies in the MDCK system demonstrated that MMP-7 activity was 2-fold greater in the apical compartment of MDCK-MMP-7(HIGH)-polarized monolayers, which suggests the apical co-release of an MMP-7 activator. In functional assays, MMP-7 over-expression increased cell saturation density as a result of increased cell proliferation with no effect on apoptosis. Apical MMP-7 activity was shown to be responsible for the proliferative effect, which occurred, as demonstrated by media transfer experiments, through cleavage of an apical substrate and not through the generation of a soluble factor. Taken together, our findings demonstrate the importance of MMP-7 secretion in relation to its mechanism of action when expressed in a polarized epithelium.     

海岛棉悬浮培养体细胞胚胎发生

取海岛棉无菌苗下胚轴作外植体,接种在含有激素２,４－Ｄ０．１ｍｇ／Ｌ和ＫＴ０．５ｍｇ／Ｌ的改良ＭＳ培养基上。经近２个月的诱导培养,获得淡黄色或淡灰色、松软、湿润、颗粒状的愈伤组织。将此类愈伤组织接入液体培养基进行悬浮培养,３～４个月后产生体细胞胚,获得各个时期的体细胞胚胎。胚性细胞悬浮系经适当的继代培养可长期保持成胚性。