江西铅山红芽芋胚性愈伤组织的包埋玻璃化超低温保存

为长期安全保存江西铅山红芽芋种质资源,本文以江西铅山红芽芋的胚性愈伤组织为对象,研究了包埋玻璃化冻存过程中各因素对细胞活力和愈伤组织成活率的影响,优化建立了江西铅山红芽芋胚性愈伤组织包埋玻璃化超低温保存体系。将约0.2 g胚性愈伤组织块包埋成海藻酸钙凝胶珠后,在25℃下转入MS+2 mg/L TDZ+1 mg/L NAA+0.75 mol/L蔗糖的培养基中于14 h/d光周期下预培养1 d;预培养后的胚性愈伤组织块用2 mol/L甘油和0.4 mol/L蔗糖的混合物在25℃下装载40 min;采用PVS2在25℃下脱水30 min,更换PVS2后直接投入液氮保存1 d;再将胚性愈伤组织块置于37℃恒温水浴中化冻3 min,然后用MS+2 mg/L TDZ+1 mg/L NAA+1.2 mol/L蔗糖的液体培养基洗涤3次,每次10 min;洗涤后的胚性愈伤组块转入MS+2 mg/L TDZ+1mg/L NAA固体培养基上先暗培养7 d再转到14 h/d光周期中培养。7 d后胚性愈伤组织块开始恢复生长,并且在30 d内分化出胚状体;将胚状体再次转入MS+2 mg/L TDZ+1 mg/L NAA固体培养基上,60 d后形成完整的植株。红芽芋胚性愈伤组织包埋玻璃化超低温保存后的平均成活率约为60%,并且红芽芋胚性愈伤组织冻后再生苗没有发生形态性状和染色体数目的变异,此结果为长期安全保存江西铅山红芽芋种质资源奠定了良好的基础。     

江西铅山红芽芋脱毒苗球茎愈伤组织诱导及其再生体系的建立

以江西铅山红芽芋脱毒苗为试材,研究不同因素对红芽芋脱毒苗球茎愈伤组织诱导及其再生体系的影响,以期对红芽芋脱毒苗的再生体系进行优化。结果表明,红芽芋脱毒苗球茎愈伤组织诱导的最佳培养基是MS+TDZ 2 mg·L^-1+2,4-D 1 mg·L^-1。红芽芋脱毒苗球茎愈伤组织分化的最佳培养基是MS+TDZ 2 mg·L^-1+NAA 1 mg·L^-1。红芽芋脱毒苗不定芽生根的最佳培养基是1/2MS+NAA 0.5 mg·L^-1+PP₃₃₃ 0.5 mg·L^-1。红芽芋再生苗最好的移栽基质为发酵后的腐锯木屑。红芽芋脱毒苗球茎愈伤组织再生苗移栽时最佳的PP₃₃₃浓度为20～50 mg·L^-1。本试验成功建立了红芽芋脱毒苗球茎愈伤组织的再生体系,为红芽芋脱毒苗转基因的研究和种质创新奠定了基础。     

KT和NAA对知母愈伤组织再分化的影响

以知母愈伤组织为材料,采用单因子试验方法,探讨不同浓度KT和NAA对其再分化的影响。结果表明:知母愈伤组织生根的最佳培养基为MS+KT 2 mg/L;愈伤组织再生芽的最佳培养基为MS+KT 2 mg/L+NAA 1 mg/L;愈伤组织再生苗长高的最佳培养基为MS+KT 2 mg/L+NAA 0.5 mg/L;愈伤组织增殖的最佳培养基为MS+KT 2 mg/L+NAA 1 mg/L。     

睡菜离体快繁技术的研究

以睡菜的幼嫩茎段为外植体,接种到附加不同浓度激素配比(6-BA/NAA)的MS培养基,诱导睡菜愈伤组织、芽及根的生长。研究发现,外植体在1.0mg/L 6-BA+0.1mg/L NAA+MS的培养基上培养10d,可观察到浅绿色的愈伤组织。愈伤组织转接到4.0mg/L 6-BA+0.3mg/L NAA+MS培养基上2周左右可生成芽。对带芽的愈伤组织再进行诱导生根进而形成完整再生植株,最适根诱导培养基为0.3mg/L 6-BA+1.0mg/L NAA+MS培养基。该实验采用植物离体快繁技术成功建立了睡菜再生体系,为睡菜种苗规模化奠定了技术基础。     

湖北双蝴蝶的组织培养研究

以湖北双蝴蝶带芽茎段、不带芽茎段及叶片为外植体,以MS为基本培养基,通过添加不同的植物生长物质种类和浓度配比,建立湖北双蝴蝶组培快繁体系。结果如下:在所有实验方案中,带芽茎段的出愈率最高,是理想的离体快繁材料。较适宜的初代培养基为MS+BA2.0mg/L+蔗糖3.0%,增殖培养基为MS+BA2.0mg/L+NAA0.1mg/L+蔗糖3.0%,而根的诱导则在1/2MS+NAA0.5mg/L+蔗糖1.5%的培养基上进行较为适宜。同时对组织培养过程中湖北双蝴蝶植株再生的方式进行了讨论。     

应用正交设计法优选黄独脱毒苗快繁培养基

通过正交设计法研究黄独脱毒苗的快繁培养基,考察KT、NAA和2,4-D对黄独脱毒苗快繁的影响。结果表明,黄独脱毒苗快繁的最佳培养基为MS+KT 2.0 mg/L+NAA 0.5 mg/L。     

膀胱果种子离体萌发与植株再生

以膀胱果种子为外植体,通过对基本培养基、生长调节剂配比及移栽基质的筛选,初步建立其离体培养再生体系。结果表明,MS培养基是较适合膀胱果种子萌芽和幼苗生长的基本培养基;诱导下胚轴脱分化成愈伤组织的较佳培养基配方为MS + 2,4-D 0.5 mg/L + 6-BA 0.5 mg/L;顶芽增殖培养的最佳培养基为MS + KT 2.0 mg/L + NAA 0.2 mg/L;芽苗生根的最佳培养基为1/2MS + NAA 1.0 mg/L;以泥炭土作为移栽基质,成活率达70%,且幼苗生长健壮。     

鱼腥草组织培养研究

以鱼腥草带侧芽茎段为外植体进行组培快繁研究。结果表明,初代培养以MS+6-BA1.0mg/L+NAA0.05mg/L为最佳,30d侧芽诱导率可达66.7%;MS+6-BA 2.0 mg/L+2,4-D 0.2mg/L+NAA 0.2mg/L对芽苗的继代增殖效果最好,40d芽苗的增殖倍数可达7.4,且芽苗较高;以MS+6-BA3.0mg/L+2,4-D 0.5mg/L+NAA0.1mg/L对芽苗的继代增重效果最好,40d芽苗鲜重为7.358g;以沙和蛭石(1:1)为基质瓶外生根效果最好,30d芽苗生根率可达84%。     

金线莲外植体筛选及愈伤组织诱导研究

以金线莲茎段、叶片、茎片、不定芽为试材,分别在添加6-BA、ZT、NAA、KT 5个不同处理的MS及1/2MS培养基上培养,诱导愈伤组织。结果表明,以茎段、茎片、不定芽为外植体,在MS + 6-BA 2.0 mg/L + NAA0.5 mg/L、MS + NAA 2.0 mg/L + KT 0.1 mg/L和MS + 6-BA 2.0 mg/L + NAA 0.5 mg/L + ZT 0.2 mg/L培养基中培养,均能成功诱导愈伤组织。不定芽为诱导愈伤组织最佳外植体,最佳培养基为MS + 6-BA 2.0 mg/L + NAA 0.5 mg/L + KT 0.2 mg/L。     

唐菖蒲花色突变株开花后子房组织培养与植株再生的研究

以唐菖蒲花色突变株开花后的子房为外植体,接种于MS+1.0mg/L BA+0.01-0.1mg/L NAA或MS+1.0mg/LBA+1.0mg/L KT+0.01-0.1mg/LNAA的培养基中,从膨大的组织表面直接诱导不定芽.膨大的组织或带不定芽的组织每隔周转入1/2MS_1.0mg/L BA+0.01-0.1mg/L ANN培养基中,不断地诱导产生不定芽,分化的不定芽转入不含激素的1/2MS培养基中,形成幼苗、然后生根,最后可形成小球茎.幼苗转入1/2MS+0.1mg/L NAA培养基中,幼苗生根,再可形成小球茎.1个唐葛蒲突变株子房,经6—7个月培养,获得了上千株试管苗.     

影响芋茎尖培养中脱毒和快速繁殖的几个生理因素

以3个芋品种（‘石川早生’、‘虾籽芋’、‘叶用芋）球茎茎尖为外植体,进行脱病毒和快繁的结果表明,外植体表面灭菌的最佳方法是剥鳞片→乙醇→新洁尔灭→剥幼叶→氯化汞;适宜茎尖分化的培养基为MS＋1．0-2．0mg·L^-16-BA＋0．2mg·L^-1 NAA。生物学方法和电镜观察显示：连续3代0．5-0．7mm茎尖剥离培养对芋花叶病毒（DMV）的脱毒率达100％。在培养基MS＋0．2mg·L^-1 NAA中,适量添加6-BA和TDZ,三品种芋的试管苗增殖效果好;附加KT,试管苗生长健壮且利于生根：添加20-100mg·L^-1的精胺（spm）,可促进不定芽的发生,与KT配合使用可促使继代增殖和成苗一步完成。完整植株在草炭土：蛭石=1：1的基质中,移栽成活率超过97％,且苗生长健壮。     

杯山药零余子愈伤组织诱导及植株再生的研究

对怀山药（Ｄｉｏｓｃｏｒｅａ ｏｐｐｏｓｉｔａ）零余子愈伤组织的诱导、分化、再生苗的生根和移栽进行了研究。结果表明：⑴在不同激素组合的培养基上怀山药零余子均能产生愈作组织,而且具有一次成苗的能力。ＢＡ２ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ２ｍｇ／Ｌ的培养基对诱导愈伤组织最有利,其出愈率达１００％;⑵在愈伤组织的分化中,ＢＡ１ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ１ｍｇ／Ｌ的激素组合是最佳的,其分化率为６３．６％,且多形成丛生芽;⑶再生植株     

栀子带芽茎段愈伤组织诱导分化及丛生芽增殖和生根研究

以栀子带芽茎段为试材,对其愈伤组织诱导分化及丛生芽增殖与生根进行初步研究。结果表明,栀子带芽茎段愈伤组织快速诱导和分化最佳培养基是MS+KT 1 mg/L+NAA 0.05 mg/L;栀子带芽茎段丛生芽增殖和生根最佳培养基是MS+KT 2.0 mg/L+NAA 0.05 mg/L。     

生姜茎尖组织培养和快速繁殖研究

以生姜茎尖为外植体进行培养,筛选诱导愈伤组织和生根的最佳培养基。结果表明,在茎尖培养中,合理的消毒处理对茎尖成活率影响很大;以MS+6-BA 1.5mg/L+NAA 0.1mg/L为最适茎尖诱导培养基,可一次诱导形成愈伤组织,并直接形成带根幼苗,月增殖倍数为6.9倍,成活率76.9%。生姜腋芽继代培养基MS+6-BA 2.0mg/L+NAA 0.1mg/L+KT 1.0mg/L,以腐殖质土:菜园土=1:1基质可促进小苗后期生长,加速成苗。     

Micropropagation ofFagus sylvatica L.

Summary An in vitro shoot multiplication system was established from juvenileFagus sylvatica L. tissues, and plantlets were regenerated. Embryonic axes were excised from beech seeds and germinated in vitro on media supplemented with 6-benzyladenine (BA) to obtain plantlets with axillary shoots. Shoot multiplication was maintained by sequential subculture of axillary shoot tips and basal segments on Woody Plant Medium supplemented with 0.5 mg/liter BA+2 mg/liter zeatin+0.2 mg/liter naphthaleneacetic acid (NAA). The effeciency of shoot multiplication clearly depended on the kind of explant used. Transfer to fresh medium every 2 wk during the 6-wk multiplication cycle improved multiplication rates. In the rooting stage, an initial 7-day dark period significantly improved rooting capacity and accelerated the emergence of roots on auxin-treated shoots. Adventitious buds were induced on the intact hypocotyls of the whole plantlets derived from the initial embryonic axis explants, especially on those cultured on medium with 1 mg/liter BA. Cotyledon and hypocotyl segments isolated from seedlings grown in vitro from embryos also exhibited capacity for adventitious bud formation, especially when cultured on media supplemented with 0.5 mg/liter BA + 0.1 mg/liter NAA.     

Preliminary studies on tissue culture and agrobacterium-medicated transformation of Brassica campestris ssp. chinensis]

The hypocotyls and cotyledons of the asepetic seedling of Brassica campestris ssp. chinensis L cv. Pudongaijiecai) were used as explants for tissue culture. Adventitious buds were differentiated on modified MS medium supplemented with TDZ 1-2 mg/L, NAA 0.2-1 mg/L and AgNO3 7.5 mg/L. The percentage of explants which formed buds of cotyledons was about 56%, and that of hypocotyls was about 37%. When the regenerated explants were transferred onto MS medium with 2 i.p. 5 mg/L and NAA 0.1 mg/L for two weeks, whole plantlets were obtained by culturing the regenerated shoots on 1/2 MS medium with NAA 0.1 mg/L. Agrobacterium tumefaciens strain (LBA 4404/PBI 121) carrying the GUS gene and Npt II gene was used for transformation. After 2 days of coculture, the hypocotyls and cotyledons were transferred onto regenerated medium containing CP 300 mg/L for bud formation. After 4-5 weeks, the differentiated buds were transferred onto selection medium with CP 200 mg/L and Km 10 mg/L for 1 month, then the green shoots were transferred onto the rooting medium containing Cef 100 mg/L and Km 20 mg/L. 4-5 weeks later, plantlets with Km resistance were obtained and some of them showed higher enzymatic activities of beta-glucuronidase than control ones.     

野葛块根脱分化与再分化相关因子研究

采用正交试验、单因子试验和植物组织培养方法,探讨几种因子对野葛块根组织脱分化与再分化的影响。结果表明,野葛块根愈伤组织诱导的最佳培养基为MS+NAA 0.5mg/L+6-BA 1.0mg/L+2,4-D 2.0mg/L,暗培养更有利于愈伤组织的诱导;野葛块根愈伤组织的最佳出芽培养基为MS+NAA 0.5mg/L+6-BA 3.0mg/L或MS+NAA 0.5mg/L+KT 2.0mg/L,光照培养更有利于愈伤组织芽的再分化;野葛块根愈伤组织再生芽生根最佳培养基为MS+NAA 0.5mg/L+PP₃₃₃ 3.0mg/L+蔗糖30g/L;PP₃₃₃ 3.0mg/L和蛭石:珍珠岩(2:1)基质能显著提高再生苗的移栽成活率。