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相似文献
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1.
鱼腥草组织培养研究   总被引:3,自引:0,他引:3  
以鱼腥草带侧芽茎段为外植体进行组培快繁研究。结果表明,初代培养以MS 6-BA1.0mg/L NAA0.05mg/L 为最佳,30d 侧芽诱导率可达66.7%;MS 6-BA 2.0 mg/L 2,4-D 0.2mg/L NAA 0.2mg/L 对芽苗的继代增殖效果最好,40d 芽苗的增殖倍数可达7.4,且芽苗较高;以MS 6-BA3.0mg/L 2,4-D 0.5mg/L NAA0.1mg/L 对芽苗的继代增重效果最好,40d 芽苗鲜重为7.358g;以沙和蛭石(1﹕1)为基质瓶外生根效果最好,30d 芽苗生根率可达84%。  相似文献   

2.
黄山药丛生芽诱导与植株快速繁殖   总被引:8,自引:1,他引:7  
马林  张玲  李卫锋 《生物技术》2004,14(2):53-54
采用黄山药的带芽茎段为外植体,试验了不同激素处理对芽诱导的影响,通过继代培养诱导丛生芽使大量增殖,经诱导生根和炼苗移栽而完成植株的快速繁殖再生。结果表明,MS 6-BA2.0mg/L NAA0.5-1.0mg/L为芽诱导的最适培养基,MS 6-BA1.0mg/L NAA0.5-1.0mg/L为继代增殖的最佳培养基,月增殖系数约为3倍,1/2MS 1BA0.5mg/L培养基诱导生根相对较好,诱导率为50%,组培苗经炼苗后,移栽成活率可达80%。  相似文献   

3.
为保护野生资源、实现人工栽培,本研究以葶苈(Draba nemorosa)嫩茎为材料,采用组织培养方法进行愈伤组织诱导与分化、不定芽生根与试管苗生根继代增殖培养,以及移栽和定植研究。结果表明,MS+6-BA0.4 mg/L+2,4-D 2.5 mg/L是愈伤组织诱导培养和继代增殖培养的理想培养基;MS+6-BA 0.6 mg/L+NAA 0.1 mg/L是愈伤组织分化培养和不定芽继代增殖培养的理想培养基;1/3MS+IAA0.6 mg/L是不定芽生根培养和生根继代增殖培养的理想培养基;试管苗移栽成活率为86.8%,定植成活率为96.4%;定植苗保持了野生葶苈的植物学性状。  相似文献   

4.
以马哈利樱桃茎段为实验材料,研究不同浓度硝酸稀土( RENO3)对其组培苗生长发育及生理作用的影响,结果表明:在马哈利樱桃茎段培养的分化培养基上添加不同浓度的RENO3(5 mg/L~20 mg/L),有利于芽分化和组培苗的生长,提高叶片中超氧化物歧化酶(SOD),过氧化物酶(POD)活性及叶绿素含量;其中RENO3浓...  相似文献   

5.
以栀子带芽茎段为试材,对其愈伤组织诱导分化及丛生芽增殖与生根进行初步研究。结果表明,栀子带芽茎段愈伤组织快速诱导和分化最佳培养基是MS+KT 1 mg/L+NAA 0.05 mg/L;栀子带芽茎段丛生芽增殖和生根最佳培养基是MS+KT 2.0 mg/L+NAA 0.05 mg/L。  相似文献   

6.
把椒蒿种子接种在MS基本培养基上获得无菌苗,将其生长整齐一致的茎段接入不同激素浓度组合的MS培养基上进行继代增殖培养和生根培养。结果表明,茎段增殖的最佳培养基为MS BA0.1~0.2 mg/L IBA0.02~0.06 mg/L;适宜的生根培养基为MS IBA0.1~2 mg/L或MS NAA0.1 mg/L,生根率可达100%。  相似文献   

7.
以日本高杆青花菜(スティックセニョール)茎段及带叶腋芽为外殖体,接种于MS BA 3.0mg/L NAA 0.5mg/L 培养基上培养20d,腋芽萌发生长成2~3cm 高的芽苗,而茎段则膨大后从切口生长出淡绿色愈伤组织,并分化出大量丛生芽。将幼苗转接到MS BA2.0mg/L NAA0.2mg/L 培养基上进行增殖培养,繁殖系数为4~6,待芽长2~3cm 时再分切成单株于1/2MS NAA0.2mg/L IBA0.1mg/L 培养基上进行生根培养,25d 后,生根率可达86%。在温度20~25℃条件下,移栽成活率82%。  相似文献   

8.
以甜叶菊优良品种的茎段为外植体,在MS基本培养基中添加不同浓度的6-BA和NAA,采用侧芽诱导法快速繁殖,研究了甜叶菊的组培快繁与工厂化育苗技术。结果表明,最佳启动培养基为MS+6BA1.5mg/L+NAA0.2mg/L,最佳增殖培养基为MS+6BA0.6mg/L+NAA0.2mg/L,增殖系数4-6,增殖周期15-20 d。最佳生根培养基为1/4MS+NAA0.2mg/L,生根率为100%,且根系发达。经过炼苗移栽,瓶苗移栽成活率在90%以上。  相似文献   

9.
杉木高效再生与基因转化的初步研究   总被引:5,自引:0,他引:5  
用取自60d龄无菌苗上的杉木茎段为外植体,在MS 6-BA0.75mg/L IBA0.25mg/L培养基中诱导芽分化,丛生芽的诱导率达到95.8%,每个外植体平均有5.2个芽。切取诱导芽单苗,转至MS NAA1.0mg/L培养基上诱导根再生,外植体出根率为91.4%。在此基础上,将杉木茎段与农杆菌AGL1共培养2d,通过在含200mg/L卡那霉素的再生培养基中培养,初步筛选出卡那霉素抗生苗,转化频率为1.1%。  相似文献   

10.
'早红'草莓高效遗传转化受体系统的建立   总被引:2,自引:0,他引:2  
本文以草莓主栽品种'早红'组培苗离体叶片和叶柄为外植体,进行叶龄、暗培养、植物生长调节剂配比及抗生素敏感性研究,建立草莓高效遗传转化的受体系统.在含3.0 mg/L 6-BA与0.1 mg/L 2,4-D的MS培养基上,30 d叶龄的叶片再生频率高达98.31%,平均每叶片再生芽数5.09个,叶柄切段的再生频率为89.25%,平均每叶柄切段再生芽数4.92个,叶片的再生频率略高于叶柄;不定芽在含0.2 mg/L 6-BA与0.2 mg/L GA_3的MS继代培养基上培养成苗.将生长状态良好的不定芽转至含0.2 mg/L IBA的1/2 MS培养基上生根,生根率达100%,平均生根数量16.27条,平均根长1.85 cm.抗生素敏感性试验表明,草莓外植体适宜的卡那霉素选择压力为25 mg/L,头孢霉素的筛选浓度为300mg/L.本研究建立的再生体系可作为草莓遗传转化的受体系统.  相似文献   

11.
以金山绣线菊愈伤组织为受体材料,采用组织培养的方法,在附加不同浓度TDZ的1/2MS培养基上诱导培养,获得再生植株。在附加0.03mg·L^-1 TDZ的培养基上获得了92.5%不定芽的再生率,且再生芽发育良好。选择抗生素筛选试验的结果表明:金山绣线菊愈伤组织对潮霉素较为敏感,在培养基中添加浓度为5~35mg·L^-1的潮霉素均对愈伤组织分化影响较大,潮霉素浓度为5mg·L^-1时,4N时间可使外植体全部褐化死亡;在培养基中添加0~100mg·L^-1的卡那霉素,不同浓度卡那霉素均对愈伤组织分化产生一定程度的影响,当卡那霉素浓度为80mg·L^-1时,愈伤组织基本不发生分化。由此确定卡那霉素为绣线菊遗传转化中适用的选择抗生素,最适选择压为80mg·L^-1。抑菌抗生素的筛选试验结果表明:200mg·L^-1的头孢霉素和200mg·L^-1。的羧苄霉素都能有效抑制农杆菌菌株LBA4404的生长,却对金山绣线菊愈伤组织的芽分化影响不大,可确定为适宜的抑菌抗生素。利用农杆菌介导法对金山绣线菊愈伤组织进行遗传转化,得到卡那霉素抗性植株164株,并初步确定预培养1d、菌液稀释10倍、侵染4min、共培养2d为金山绣线菊最优遗传转化体系,为金山绣线菊的基因工程育种奠定基础。  相似文献   

12.
楸树无性系离体培养特性差异研究   总被引:1,自引:0,他引:1  
对选育的5个楸树无性系(004-1、1-3、2-6、015-1、1-4)进行组织培养比较研究,以明确楸树无性系再生芽增殖和生根培养中遗传因素及外界条件的影响。结果表明:楸树不同无性系是影响瓶苗生长的主要因素,继代培养无性系间的方差分量在93.89%~98.16%,芽增殖系数、增殖芽数、芽长、叶数、茎段基部愈伤组织横向膨大、茎段基部愈伤组织纵向膨大在不同无性系间达到极显著水平;生根率、生根数和根长无性系间差异极显著,方差分量分别为92.97%、88.75%、96.25%。5个无性系生长性状以004-1表现最好,增殖系数为10.74,生根率为61.11%,移栽成活率为74.44%,无性系1-4最弱。  相似文献   

13.
本研究以干冷保存(-20℃,相对湿度15%)150 d的云南龙竹(Dendrocalamus yunnanicus)颖果为实验材料,通过种子萌发建成丛芽无菌无性系进行快繁和离体保存。研究表明,丛芽增殖的最佳培养基为MS+6-BA 2 mg/L+NAA 0.2 mg/L,蔗糖浓度以3%为佳;生根培养的最佳培养基为MS+IBA 1 mg/L+NAA 1 mg/L,以单芽诱导生根为好;离体保存丛芽的最适培养基为MS+6-BA0.5 mg/L+NAA0.2 mg/L;当培养温度由室温(25±3)℃降低至(20±3)℃和12℃时,其继代周期可由原来的2个月分别延长至4个月和8个月。在组织培养过程中发现白化苗或叶色变异现象。  相似文献   

14.
Studies were performed to define tissue culture techniques and culture conditions for morphogenesis, callus culture and plantlet culture of sweet orange (Citrus sinensis (L.) Osb.), citron (C. medica L.) and lime (C. aurantifolia) (Christm. Swing). The optimal concentrations of NAA to induce root formation on stem segments were 10 mg l-1 for sweet orange and lime, and 3 mg l-1 for citron. The optimal BA concentration for shoot and bud proliferation was 3 mg l-1 for sweet orange and citron, and 1 mg l-1 for lime. Callus initiation was accomplished in a culture medium containing 10 mg l-1 NAA and 0.25 mg l-1 BA. Callus was maintained by periodical subculture into the same medium supplemented with 10% (v:v) organge juice. In vitro plantlets of the three species were obtained by rooting of shoots developed from bud cultures, and of citron and lime by development of shoots from root cultures. The plants were successfully established on soil.  相似文献   

15.
A protocol was developed for Agrobacterium-mediated genetic transformation of niger [ Guizotia abyssinica (L.f.) Cass.] using hypocotyl and cotyledon explants. Hypocotyls and cotyledons obtained from 7-day-old seedlings were co-cultivated with Agrobacterium tumefaciens strain EHA101/pIG121Hm that harbored genes for beta-glucuronidase (GUS), kanamycin, and hygromycin resistance. Following co-cultivation, the hypocotyl and cotyledon explants were cultivated on MS medium containing 1 mg/l 6-benzylaminopurine (BA) for 3 days in darkness. Subsequently, hypocotyl and cotyledon explants were transferred to selective MS medium containing 1 mg/l BA, 10 mg/l hygromycin, 10 mg/l kanamycin, and 500 mg/l cefotaxime. After 6 weeks, hypocotyls and cotyledons produced multiple adventitious shoot buds, and these explants were subcultured to MS medium containing 1 mg/l BA, 30 mg/l hygromycin, and 30 mg/l kanamycin. After a further 3 weeks, the explants (along with developing shoot buds) were subcultured to MS medium containing 1 mg/l BA, 50 mg/l kanamycin, and 50 mg/l hygromycin for further selection. Transgenic plants were obtained after rooting on half-strength MS medium supplemented with 0.1 mg/l alpha-naphthaleneacetic acid, 50 mg/l kanamycin, and 50 mg/l hygromycin and were confirmed by GUS histochemical assay and polymerase chain reaction analysis. Genomic Southern blot hybridization confirmed the incorporation of the neomycin phosphotransferase II gene into the host genome.  相似文献   

16.
仙人掌的微繁殖   总被引:1,自引:0,他引:1       下载免费PDF全文
程磊  胡宋英 《广西植物》2003,23(3):259-263,I002
成功建立了仙人掌离体快繁的实验体系 ,并且对影响微繁殖的一些因素 ,诸如激素组合、外植体的物理状态、大量元素的含量等进行了研究。结果表明 :BA对仙人掌芽增殖具明显作用 ,MS +BA 5 .0mg/L +IBA 0 .1mg/L为最适增殖培养基 ;接种方式实验表明劈接优于整棵。钙、镁离子浓度对试管苗生长没有影响 ,但影响生根数及根长 ;NAA抑制根的伸长 ,但一定浓度可促进生根。总体而言 ,最适的生根培养基为 1 /2MS。同时发现块接比单芽接具有优势。试管苗在形态上出现一些变异。实验结果对仙人掌科其它植物的快速繁殖具有参考意义  相似文献   

17.
大花蕙兰组培快繁技术研究   总被引:2,自引:0,他引:2  
选用大花蕙兰杂交新品种1053为外植体,采用1/2MS为基本培养基进行大花蕙兰组培快繁技术研究,结果表明:类原球茎诱导的最佳外植体为大花蕙兰鳞茎,培养基最佳激素浓度配比为0.5 mg/L 6-BA+0.2 mg/L NAA;类原球茎增殖与分化芽最佳激素浓度配比为1.0 mg/L 6-BA+0.3 mg/L NAA;幼芽增殖的最佳激素浓度配比为2.0 mg/L 6-BA+0.5 mg/L NAA,最佳有机添加物为150 ml/L椰汁,幼芽增殖正交试验得出影响因素主次顺序:6-BA〉椰汁添加物〉NAA,优组合为2 mg/L 6-BA、0.5 mg/L NAA、添加物椰汁150 ml/L;诱导生根的最佳激素浓度配比为0.3 mg/L IBA+0.2 mg/L NAA,添加香蕉泥100 g/L对幼苗根生长有显著的促进作用。优化后的大花蕙兰组培快繁技术参数,可为大规模工厂化生产提供参考。  相似文献   

18.
为保存和加快繁殖(?)木新芽变材料,采用离体培养技术对外植体进行了愈伤组织诱导,分化,丛芽增殖和生根培养的研究.结果表明:叶片形成的愈伤组织都不分化,而茎段愈伤组织在含细胞分裂素 BA,KT 的培养基中均可分化,以 MS+KT0.6+IBA0.5培养基分化效果好,分化率达3.0个芽/块.1/2MS+IBA 2 mg/L 培养基最适合生根培养;芽变材料在黑暗条件下生根率达100%.  相似文献   

19.
八种不同花色一串红组织培养快繁的研究   总被引:10,自引:0,他引:10  
对不同花色一串红组织培养快繁方法进行了研究,实验确定了一串红组织培养的最佳外植体为带腋芽的茎段,茎段的芽丛诱导的最佳培养基为1/2 MS+NAA 0.1MG/l+6-BA2.0mg/L+IBA0.5mg/L,其分化率为71.4%,芽增殖率为140.6%,最佳生根培养基为1/4 MS+NAA 0.5mg/L,生根率为91.6%,初步建立了快繁体系。  相似文献   

20.
以普通养麦(Fagopyrum esculentum Moench)植株带节茎段为外植体,用正交设计法研究不同激素处理对荞麦腋芽、丛生芽和根的诱导及分化过程的影响,建立了荞麦离体培养快速繁殖技术。极差分析表明,6-BA是诱导荞麦茎段腋芽和根发育的主要因素,TDZ是诱导丛生芽的关键因素。诱导荞麦茎段腋芽发育的最佳培养基为:MS0+6-BA1.0mg/L+NAA0.1mg/L,腋芽诱导率为67.9%。其中,以第二、三节位的腋芽诱导率较高,达80%以上。诱导荞麦茎段丛生芽发育的最佳培养基为:MS0+6-BA4.0mg/L+TDZ0.06mg/L,丛芽分化率为166.7%。诱导生根的最佳培养基为:1/2MS0+6-BA1.0mg/L+NAA1.0mg/L,生根率为82.8%。该组织培养技术的建立为养麦快速繁殖提供了新途径。  相似文献   

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