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2—KLG产生菌混合发酵特性及最佳混生模式的研究 总被引:3,自引:1,他引:2
氧化葡萄糖酸杆菌合成的2-KLG对巨大芽孢杆菌的生长繁殖具有明显的抑制作用,可缩短其生长周期。发酵体系中巨大芽孢杆菌的存在是氧化葡萄糖酸杆菌的生长繁殖和合成2-KLG所必需的,发酵过程中巨大芽孢杆菌裂解所释放的活性物质可能是刺激氧化葡萄糖酸杆菌合成2-KLG的主要原因。二菌混合发酵需在适宜的混生模式下才可达到最佳效果。 相似文献
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在由氧化葡萄糖酸杆菌和普通生酮古龙酸杆菌构建的维生素C两菌一步发酵体系中,为了强化氧化葡萄糖酸杆菌对普通生酮古龙酸杆菌生长和产酸的促进作用,文中在氧化葡萄糖酸杆菌中构建硫辛酸合成功能模块。由含硫辛酸功能模块的氧化葡萄糖酸杆菌和普通生酮古龙酸杆菌组成的两菌一步体系,能减轻普通生酮古龙酸杆菌单菌培养时的生长抑制,强化两菌的互作关系,使维生素C前体(2-酮基-L-古龙酸,2-KGA)的产量提高到73.34 g/L(对照组为59.09 g/L),醇酸转化率提高到86.0%。研究结果为进一步优化维生素C两菌一步发酵体系提供了新思路。 相似文献
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氧化葡萄糖酸杆菌SCB329和苏云金芽孢杆菌SCB933是混合发酵产生维生素C前体2-KLG两株主要菌种,本文对氧化葡萄糖酸杆菌SCB329的纯培养,传代及纯小菌的保存及其对产酸的影响作了研究。 相似文献
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通过在培养基中添加不同量的玉米浆,研究其对氧化葡萄糖酸杆菌(俗称小菌)生产Vc前体2-酮基-L-古龙酸的影响,并研究玉米浆成分中的12种主要氨基酸对小菌产酸的影响。结果表明:每100 mL发酵培养基中添加2.5 g左右过滤除菌玉米浆时,2-酮基-L-古龙酸产量高达26.84 mg/mL,小菌活菌数为不添加玉米浆时小菌单菌发酵下的9.74倍。过量玉米浆抑制小菌产酸。12种氨基酸单独与氧化葡萄糖酸杆菌发酵培养及全部混合后与氧化葡萄糖酸杆菌发酵培养对产酸及菌体生长无影响。 相似文献
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维生素C发酵中伴生菌对氧化葡糖杆菌的影响 总被引:16,自引:0,他引:16
通过分析维生素C二步发酵过程中活菌数、产酸量、pH、糖酸转化活力等 ,研究了蜡状芽孢杆菌 (俗称大菌 )对氧化葡糖杆菌 (俗称小菌 )生长和产酸的影响。结果表明 ,在大菌存在情况下 ,小菌的活菌数约为单菌培养条件下的 5倍 ,产酸量为单菌培养条件下的 2~ 3倍 ,糖酸转化活力为单菌培养条件下的 2~ 3倍 ,提示在混合菌发酵条件下大菌仅仅是通过刺激小菌的生长而促进小菌产酸。用小菌休止细胞进行的糖酸转化实验结果也表明 ,无论大菌的发酵上清液还是破碎的菌体 ,都未发现对小菌产酸产生直接影响。 相似文献
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维生素C二步发酵中巨大芽孢杆菌对氧化葡萄糖酸杆菌生长和产酸的影响 总被引:12,自引:2,他引:10
通过测定氧化葡萄糖酸杆菌转化L-山梨糖中成ZKGA的细胞酶活性、摇瓶发酵及中长变化,研究了Vc:步发酵中巨大茅孢杆菌对氧化葡萄糖酸杆菌生长和产酸作用的影响。结果显示:巨大芽孢杆菌胞外液和胞内液均可促进氧化葡萄糖酸杆菌的增殖,主要表现为缩短其中长周期中的延迟期;巨大芽孢杆菌通过所产生的部分生物活性物质增强氧化葡萄糖酸杆菌产酸的细胞酶活性,促进氧化葡萄糖酸杆菌转化L一山梨糖生成2KGA. 相似文献
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吡咯喹啉醌(Pyrroloquinoline quinone,PQQ)是一种重要的氧化还原酶辅基,具有多种生理生化功能,在食品、医药卫生及农业等领域具有广泛的应用。文中采用重组氧化葡萄糖酸杆菌生物合成吡咯喹啉醌。首先构建丙酮酸脱羧酶基因GOX1081敲除的重组菌G. oxydans T1,减少副产物乙酸的形成。然后利用筛选的内源性组成型启动子P0169融合表达pqqABCDE基因簇及tldD基因,构建重组菌G. oxydans T2。最后对发酵培养基添加物和发酵条件进行优化。结果显示重组菌G. oxydans T1、G. oxydans T2生物量较野生菌分别提高43.02%和38.76%,而PQQ的产量分别是野生菌的4.82倍和20.5倍。进一步优化G. oxydans T2碳源及培养条件,最终PQQ产量达(51.3241±0.8997)mg/L,是野生菌的345.62倍。通过基因工程手段,可以有效提高氧化葡萄糖酸杆菌的生物量和合成PQQ的产量,为改善PQQ生物合成效率奠定基础。 相似文献
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一株芽孢杆菌在维生素C二步发酵中对小菌的促进作用 总被引:1,自引:0,他引:1
从土壤中分离到1株能更好促使小菌生长和产酸的芽孢杆菌B601,作为伴生菌与巨大芽孢杆菌相比,在生长过程中,发酵液中B601活菌数小于巨大芽孢杆菌,而其芽孢数则多于巨大芽孢杆菌。对B601组成菌系的发酵条件进行优化,得到如下结果:100g/L L-山梨糖、6g/L尿素、10g/L玉米浆、培养温度30℃和发酵周期44h。与巨大芽孢杆菌组成菌系相比其底物,L-山梨糖质量浓度提高了25%,尿素下降了50%.玉米浆质量浓度下降了33%,温度提高了2℃,发酵周期缩短了4h。结果表明:B601作为伴生菌,与巨大芽孢杆菌相比,该菌株明显提高了发酵效率。 相似文献
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In this study, the advantage of a novel measuring device for the online determination of oxygen and carbon dioxide transfer rates in shaking-flasks is reported for glucose oxidation by Gluconobacter oxydans. In this fermentation process, this device was used for the characterization of the oxidation pattern of different strains. G. oxydans NCIMB 8084 forms 2,5-diketogluconate from d-glucose in a multi-stage process via three different membrane-bound dehydrogenases. This strain was chosen for a scale-up of the process from shaking-flasks to a 2-l stirred vessel. An enhancement of 2,5-diketogluconate production was realized by controlling the pH at different levels during the fermentation. 相似文献
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Cloning of genes coding for L-sorbose and L-sorbosone dehydrogenases from Gluconobacter oxydans and microbial production of 2-keto-L-gulonate, a precursor of L-ascorbic acid, in a recombinant G. oxydans strain. 总被引:3,自引:0,他引:3 下载免费PDF全文
Y Saito Y Ishii H Hayashi Y Imao T Akashi K Yoshikawa Y Noguchi S Soeda M Yoshida M Niwa J Hosoda K Shimomura 《Applied microbiology》1997,63(2):454-460
We have purified L-sorbose dehydrogenase (SDH) and L-sorbosone dehydrogenase (SNDH) from Gluconobacter oxydans T-100 that showed an ability to convert D-sorbitol to 2-keto-L-gulonate (2-KLGA). A genomic library of Gluconobacter oxydans T-100 was screened with a probe, a 180-bp PCR product which was obtained from degenerate oligodeoxyribonucleotides based on the elucidated sequence of the purified SDH (used as primers) and the genomic DNA of G. oxydans T-100 (used as a template). From sequencing of the DNA from a clone positive to the probe, the SNDH and the SDH were estimated to be coded in sequential open reading frames with 1,497 and 1,599 nucleotides, respectively, which was confirmed by expression of the DNA in Escherichia coli that showed both enzymatic activities. The DNA was introduced to a shuttle vector which was prepared from a plasmid of G. oxydans T-100 and pHSG298 to obtain an expression vector designated pSDH155. The production of 2-KLGA by pSDH155 in G. oxydans G624, an L-sorbose-accumulating strain, was improved to 230% compared to that of G. oxydans T-100. Chemical mutation of the host strain to suppress the L-idonate pathway and replacement of the original promoter with that of E. coli tufB resulted in improving the production of 2-KLGA. Consequently, high-level production from D-sorbitol to 2-KLGA (130 mg/ml) was achieved by simple fermentation of the recombinant Gluconobacter. 相似文献