重组人胰激肽原酶复性工艺的研究

目的:研究重组人胰激肽原酶包涵体变性及复性的工艺。方法:对本实验室构建的重组人胰激肽原酶大肠杆菌进行IPTG诱导表达表达成功后,菌体经超声破碎释放包涵体,包涵体经洗涤、变性、稀释和尿素梯度凝胶过滤色谱这两种方法复性后(Sephadex-G75),通过测定酶活检验复性效果。结果:①重组人胰激肽原酶工程菌经过IPTG诱导后能够表达目的蛋白,目的蛋白以包涵体形式存在,将细胞破碎后,包涵体经过3次洗涤,纯度达到71.93%;②变性包涵体经24小时稀释复性后,蛋白浓度达到72.61μg/m L,酶的比活达到13.84 U/mg;③变性包涵体经过2个小时的尿素梯度凝胶过滤复性后,蛋白浓度可达到830.07μg/mL,酶的比活达到48.61 U/mg。结论:两种复性方法均可以使包涵体达到一定的浓度和比活,比较发现尿素梯度凝胶过滤色谱具有复性时间短和比活力高等优点,可作为重组人胰激肽原酶复性的一种有效的手段。     

反胶束萃取技术分离胰激肽原酶

研究了用十六烷基三甲基溴化铵（CTAB）/正己醇/正辛烷反胶束溶液萃取和反萃取商业用胰激肽原酶时,水相pH值、离子强度和种类、CTAB浓度和助表面活性剂浓度等因素对分离效率的影响,并从反胶束微观结构给予解释。结果表明：［CTAB］＝0.02 mol•L-1,正己醇／正辛烷(V/V)＝1：5,萃取pH＝9.0,反萃pH＝7.0,萃取［KBr］＝0.1 mol•L-1,反萃［KBr］＝1.5 mol•L-1,反萃取加15％乙醇(V/V)时,萃取率接近100%,反萃取活性回收得率在80%以上。商业用酶的纯化倍数最高为1.97倍,粗酶为7.15倍,且粗酶纯化后比活在200U／mg以上,电泳分析证实了纯化效果,显示了很好的工业前景。     

重组人ZP3蛋白在大肠杆菌中的高效表达

目的:用基因工程方法制备重组人ZP3蛋白。方法:以全长人ZP3 cDNA片段为模板,通过PCR扩增出编码人ZP3蛋白不同肽段的cDNA片段,然后将这些cDNA片段分别插入到表达载体pET-19b的NcoⅠ-BamHⅠ或NdeⅠ-BamHⅠ位点内,共构建成6种人ZP3蛋白非融合表达质粒(pEZP3-1~pEZP3-6)和3种人ZP3蛋白融合表达质粒(pEZP3-7~pEZP3-9)。将这9种表达质粒分别转化大肠杆菌Rosetta2(DE3)感受态细胞并选择出Apr转化子,将Apr转化子接种到NZCYM培养基中(含AP 100μg/mL),在35~37℃振荡培养到对数生长期,加入IPTG至1.0~1.5mmol/L浓度诱导培养3h,离心收集细胞进行SDS-PAGE电泳检测和Western Blot杂交分析。结果:这9种人ZP3蛋白表达质粒在大肠杆菌Rosetta2(DE3)中得到高效表达,目的蛋白占总细胞蛋白的10~25%,表达产物均以包涵体形式存在。结论:成功构建了重组人ZP3蛋白原核表达系统,为进一步研究和应用人ZP3蛋白打下了基础。     

人组织激肽释放酶成熟蛋白在大肠杆菌中的高效表达

将编码人组织激肽释放酶成熟蛋白的基因片段扩增并分别克隆到原核表达载体pET2 8(b)及分泌型表达载体pET2 0 (b)中 ,使其C端融合 6×HisTag序列 .转化不同受体菌 ,IPTG诱导表达后利用SDS PAGE、免疫印记等方法对重组蛋白进行分析 .在 6株基因工程菌株中 ,均表达出分子量约30kD的激肽释放酶融合蛋白 ,其中激肽释放酶在pET2 8载体中的表达水平高于pET2 0载体 .pET2 8和pET2 0载体表达的重组激肽释放酶蛋白分别占菌体总蛋白约 2 6 %和 10 % .Western印迹分析表明 ,目的蛋白可与抗人血清KK单克隆抗体发生特异性反应 .未经纯化的激肽释放酶融合蛋白具有一定的水解苯甲酰精胺酸乙酯 (BAEE)的能力 .在大肠杆菌中获得了人组织激肽释放酶的高效表达 ,表达产物具有免疫原性和生物活力 ,这为研究其生物功能和开发基因工程药物奠定基础     

重组人肝素酶在毕赤酵母中的表达

目的:建立肝素酶表达系统,大量制备人肝素酶,用于肝素酶的深入研究,及其抑制剂筛选模型的建立。方法:采用RT-PCR方法从肝癌细胞HepG2中克隆肝素酶全长cDNA,转入毕赤酵母表达体系,经甲醇诱导表达。结果:四唑蓝活性检测结果表明,表达产物具有肝素酶活性;Western印迹证实表达产物可被肝素酶抗体识别。结论:表达产物中含具有肝素酶活性的重组人肝素酶。     

胰高血糖素在大肠杆菌中的分泌表达

报道了用基因工程方法构建含phoA(碱性磷酸酯酶)启动子、phoA信号肽与胰高血糖素基因的表达载体pAGluT.实验证明,转化了pAGluT的大肠杆菌(E.coli YK537)可高水平地分泌表达胰高血糖素,其表达量为80 mg/L.phoA表达系统分泌表达的胰高血糖素的物化性质与天然胰高血糖素相同,并具有相同的生物活性.这一结果不仅为基因工程生产胰高血糖素打下基础,亦为研制胰高血糖素的拮抗剂以及其他多肽的基因工程研究提供了新的思路.     

产GL-7-ACA酰化酶重组大肠杆菌的构建和表达

为了实现GL-7-ACA酰化酶在大肠杆菌中的成功表达,将GL-7-ACA酰化酶基因用PCR的方法去除其信号肽序列,并将其连接到质粒pET-28a,通过筛选得到了表达GL-7-ACA酰化酶的重组菌B121(DE3),pET-ACY。分别考察了诱导温度、菌浓(OD600)、诱导剂IFrG的用量等因素对重组菌表达GL-7-ACA酰化酶的影响。在优化条件下,GL-7-ACA酰化酶酶活可达266U／L。GL-7-ACA酰化酶经一步DEAE-Sepharose纯化即可达到80％的纯度,酶活收率为50％。     

重组人IL-1ra在大肠杆菌中的可溶性表达

利用PCR技术从含有IL-1ra的质粒上扩增IL-1ra基因,经过序列测定后插入表达载体pTIG-Trx,并转化大肠杆菌BL21(DE3),用IPTG进行诱导表达。经SDS-PAGE分析显示,IL-1ra表达质粒在大肠杆菌中的诱导表达产物出现相对分子量大约为17000的一条新生蛋白质带,其大小与预期结果一致,经Western和ELISA分析,证明该带即为目的蛋白,SDS-PAGE显示目的蛋白全部以可溶性蛋白的形式存在。超声破碎后,上清经金属螯和层析纯化获得纯度约为98％的蛋白样品。     

重组人生长激素在大肠杆菌BL21（DE3）中高效表达研究

对重组人生长激素基因工程菌ｐＥＴ－１１ｂ／ｒｈＧＨ／ＢＬ２１的培养条件进行了优化,在ＮＢＳ ＭＰＰ－４０发酵罐中实现了高密度培养和高效表达,三批实验结果表明,在较短的发酵时间（１２ｈ）内细菌干重达８５ｇ／Ｌ,重组人生长激素占总蛋白量的２５％左右。     

重组人碱性成纤维细胞生长因子在大肠杆菌中的高效表达*

利用基因改造的方法可以优化外源基因在大肠杆菌中的表达。利用逆转录PCR技术从原代培养的人成纤维细胞中克隆出人碱性成纤维细胞生长因子基因,在不改变氨基酸序列的前提下对该基因的上游部分序列进行改造,并将其插入表达载体pET-3c,转入大肠杆菌阳BL21（DE3）,IPTG诱导表达,表达蛋白占菌体总蛋白的30％以上,并具有良好的生物活性。     

用重组大肠杆菌发酵生产人生长激素研究

通过不同培养基、不同糖浓度对重组菌Ｅ．ｃｏｌｉＤＨ１０Ｂ／ｐＩＮⅢＡ３ＨＧＨ的菌体生长与外源蛋白表达量的影响的比较,确定较为合适的培养条件,并对发酵过程中调节ｐＨ的氨水用量与外源蛋白的表达量之间的相关性作探索,得到相关性曲线,从而根据氨水用量了解细菌的生长状况。     

植物交替氧化酶(AOX)在大肠杆菌中优化表达

植物交替氧化酶(Alternative Oxidase,AOX)位于高等植物线粒体内膜,从细胞色素途径的辅酶Q分岔,催化4个电子还原氧分子形成水的另一终端氧化酶。分离纯化有活性的AOX比较困难。本文研究AOX原核表达,选择pFLAG-1分泌表达载体,用异丙基硫代-β-D-半乳糖苷(IPTG)诱导AOX优化表达,pFLAG-1-AOX大肠杆菌优化表达条件为:宿主DH5α、温度37℃、细胞密度OD600=0.6、IPTG浓度0.2mmol/L,诱导后60min收获细胞;获得少量可溶的细胞外周质AOX和大量不溶的AOX,为深入研究AOX打下基础,同时为研究膜蛋白原核表达提供依据。     

番茄(Solanum lycopersicum)果胶酸裂解酶P56在大肠杆菌中的重组表达

果胶酸裂解酶P56在番茄花粉管伸长过程中起着重要的作用,为了制备番茄P56蛋白的抗体,进行番茄花粉管萌发过程中P56蛋白的免疫组织化学研究,对P56基因在大肠杆菌系统的重组表达进行了研究。先采用Overlap-PCR的方法,从番茄基因组DNA中克隆了成熟P56蛋白的cDNA序列(LAT56),再构建重组表达质粒pET28a( )-LAT56,转化大肠杆菌BL21-CodenPlus(DE3)-RIL,得到了重组表达工程菌pET-28a( )-LAT56-BL21-Co-denPlus(DE3)-RIL。在0.5 mmol/L IPTG、15℃和180 r/min条件下,经过60 h的诱导培养,重组蛋白表达量为细胞总蛋白的30%左右,主要以包涵体形式存在,重组蛋白经Ni2 -nitrilotriacetate-agrose亲和柱层析,得到了SDS-PAGE显示为单一蛋白带的纯化蛋白。     

原核系统可溶性表达策略

获得大量目的蛋白的最简单最经济的方法是利用原核表达系统表达外源基因.但由于原核系统的自身特点,使所表达的蛋白常常形成无活性的包涵体.多年来世界各国的研究为解决这一问题尝试了多种方法.本简单介绍原核表达系统的特点及提高蛋白可溶性表达的常用方法.     

Analysis of the variability of S-fimbriae expression in an Escherichia coli pathogen

The uropathogenic Escherichia coli wild-type strain 536 produces S-fimbriae, P-related fimbriae and type I fimbriae. Using immuno-colony dot and ELISA techniques, variants were detected showing an increased degree of S-fimbrial production. It was demonstrated by immunofluorescence microscopy that in normal (wild-type) and hyper-S-fimbriated E. coli populations non-fimbriated cells also exist, and that the percentage of S-fimbriated and non-fimbriated bacteria was roughly identical in either population. Hyper-S-fimbriated variants could be stably maintained. The transition from wild-type to hyper-S-fimbriation, which occurs spontaneously, is markedly higher than vice versa. Southern blot analysis of the S fimbrial adhesin (sfa) determinants of normal and hyper-fimbriated strains revealed no marked difference in the gene structure.     

Human intestinal tissue tropism of intimin epsilon O103 Escherichia coli

Human intestinal in vitro organ culture was used to assess the tissue tropism of human isolates of Escherichia coli O103:H2 and O103:H- that express intimin epsilon. Both strains showed tropism for follicle associated epithelium and limited adhesion to other regions of the small and large intestine. This is similar to the tissue tropism shown by intimin gamma enterohaemorrhagic (EHEC) O157:H7, but distinct from that of intimin alpha enteropathogenic (EPEC) O127:H6.     

人结合珠蛋白cDNA 克隆及其在大肠杆菌中的表达和鉴定

目的：克隆人结合珠蛋白（haptoglobin,Hp）cDNA ,并在大肠杆菌中表达和鉴定。方法：从Hela 细胞中分离总RNA,采用RT-PCR 方法获得人Hp cDNA,分别克隆至原核表达载体pET-32a和PGEX-4T-1,转化至大肠杆菌BL21,IPTG 诱导表达,并进行SDS-PAGE 及Western blot 鉴定。结果: 成功构建了高效原核表达质粒PET-32a-Hp 和PGEX-4T1-Hp;Western 印迹结果表明,经IPTG 诱导,在大肠杆菌中表达了分子量约30 kD和37 kD 的目的蛋白;表达产物经Ni2+-NTA 离子交换树脂纯化, 纯度>90%。结 论：在E.coli成功表达和纯化了人Hp 融合蛋白,为进一步开发人Hp 诊断试剂打下基础。     

Human milk fractions inhibit the adherence of diffusely adherent Escherichia coli (DAEC) and enteroaggregative E. coli (EAEC) to HeLa cells

Binding to a specific receptor is an essential step for most enteropathogens to initiate an intestinal infection. We analyzed the inhibitory effect of human milk and its protein components on adhesion of two diarrheagenic Escherichia coli strains, diffusely adherent E. coli (DAEC) and enteroaggregative E. coli (EAEC), to HeLa cells. Defatted milk, whey proteins, immunoglobulin and non-immunoglobulin fractions, in concentrations lower than usually found in whole milk, inhibited both DAEC and EAEC adhesion, indicating that human milk components may contribute to the defense of the infants against enteropathogens.     

肠三叶因子在大肠杆菌中的表达、纯化及其抗体制备

目的:获得肠三叶因子(ITF)的原核表达产物及抗rITF抗体,为深入研究ITF的作用机制及其受体研究奠定基础。方法:常规提取人小肠组织总RNA,用RT-PCR获得ITF编码基因片段,克隆至质粒pET32a获得原核表达栽体,双酶切和测序后转化至Origami B(DE3)用IPTG诱导表达,优化条件获得最大表达产量;用SDS-PAGE、Western blot鉴定表达产物,亲和层析纯化获得的重组蛋白rITF皮下多点注射家兔,制备多克隆抗体,并用此抗体进行大鼠肠组织免疫组化研究。结果:测序证实PCR扩增获得ITF全长基因序列与基因文库中的完全一致,将该基因片段正确插入表达载体pET32a中、优化表达条件后,重组蛋白的表达量达到50mg/L;Western blot证明重组蛋白具有良好的抗原性和特异性;通过Ni-NTA亲和层析、超滤离心后,得到90%纯度的蛋白;收集兔血清,纯化后获得特异性良好的ITF抗体,免疫组化染色肠组织显示ITF表达的部位定位于杯状细胞。结论:成功构建了表达载体pET32a-ITF,在大肠杆菌中表达并纯化获得纯度较高的rITF,并获得了生物活性较高的ITF抗体,ITF主要在肠道杯状细胞分泌表达。     

Expression of Staphylococcus aureus enterotoxin type D in Escherichia coli X1776

The Staphylococcus aureus enterotoxin type D was cloned and expressed in Escherichia coli X1776 either as mature toxin or as a fusion with E. coli beta-galactosidase. Regulated expression was obtained and levels of toxin produced were in the order of 10(-3)-fold higher than in S. aureus.